Мостиковая нуклеиновая кислота - Bridged nucleic acid
А мостиковая нуклеиновая кислота (BNA) является модифицированным РНК нуклеотид. Иногда их также называют ограниченными или недоступными РНК. молекулы. BNA мономеры может содержать пятичленную, шестичленную или даже семичленную мостиковую структуру с «фиксированным» C3'-эндо сахарное сморщивание.[1] Мостик синтетически вводят в 2 ', 4'-положение рибозы с получением мономера 2', 4'-BNA. Мономеры могут быть включены в олигонуклеотид полимерные структуры с использованием стандартной химии фосфоамидита. BNA представляют собой структурно жесткие олигонуклеотиды с повышенной аффинностью связывания и стабильностью.
Химические структуры
Химическая структура мономеров BNA, содержащих мостик в 2 ', 4'-положении рибозы, с образованием мономера 2', 4'-BNA, синтезированного группой Такеши Иманиши.[2][3][4][5][6][7] Природа мостика может различаться для разных типов мономеров. Трехмерные структуры для A-РНК и B-ДНК использовали в качестве матрицы для дизайна мономеров BNA. Целью дизайна было найти производные, которые обладают высокой аффинностью связывания с комплементарными цепями РНК и / или ДНК.
Повышенная конформационная негибкость сахарного фрагмента в нуклеозиды (олигонуклеотиды) приводит к увеличению высокой аффинности связывания с комплементарной одноцепочечной РНК и / или двухцепочечной ДНК. Первые мономеры 2 ', 4'-BNA (LNA) были впервые синтезированы группой Такеши Иманиши в 1997 году.[2] за ним в 1998 году независимо последовала группа Джеспера Венгеля.[8]
BNA нуклеотиды могут быть включены в ДНК или РНК олигонуклеотиды в любом желаемом месте. Такие олигомеры синтезируются химическим путем и в настоящее время коммерчески доступны. Конформация рибозы с мостиковой связью усиливает стэкинг оснований и предварительно организует скелет олигонуклеотида, значительно повышая их гибридизационные свойства.
Включение BNA в олигонуклеотиды позволяет получать модифицированные синтетические олигонуклеотиды с равной или более высокой аффинностью связывания с комплементом ДНК или РНК с превосходной способностью распознавать одиночное несовпадение; лучшее избирательное связывание РНК; более сильные и более последовательные символы, образующие триплекс; выраженная более высокая устойчивость к нуклеазам, даже более высокая, чем у аналогов Sp-фосфоротиоата; и хороший водный растворимость полученных олигонуклеотидов по сравнению с обычными олигонуклеотидами ДНК или РНК.
Новые аналоги BNA, представленные группой Иманиши, были разработаны с учетом длины мостиковой часть в учетную запись. Шестичленная мостиковая структура с уникальной структурной особенностью (связь N-O) в сахарном фрагменте была разработана, чтобы иметь атом азота. Этот атом улучшает образование дуплексов и триплексов за счет снижения отталкивания между отрицательно заряженными фосфатами основной цепи. Эти модификации позволяют контролировать сродство к комплементарным цепям, регулировать устойчивость к расщеплению нуклеазами и синтез функциональных молекул, предназначенных для конкретных применений в геномике. Свойства этих аналогов были исследованы и сравнены со свойствами предыдущих 2 ', 4'-BNA (LNA) модифицированных олигонуклеотидов группой Иманиши. Результаты Иманиши показывают, что «2 ', 4'-BNANC-модифицированные олигонуклеотиды с этими профилями имеют большие перспективы для применения в антисмысловых и антигенных технологиях ».
Предлагаемый механизм действия АОН
Ямамото и др. в 2012[9] продемонстрировали, что антисмысловые терапевтические средства на основе BNA ингибируют экспрессию PCSK9 в печени, что приводит к сильному снижению сывороточных уровней LDL-C у мышей. Полученные данные подтвердили гипотезу о том, что PCSK9 является потенциальной терапевтической мишенью для гиперхолестеринемии, и исследователи смогли показать, что антисмысловые олигонуклеотиды (AON) на основе BNA индуцируют действие по снижению холестерина у мышей с гиперхолестеринемией. Наблюдалось умеренное повышение уровней аспартатаминотрансферазы, АЛТ и азота мочевины в крови, тогда как гистопатологический анализ не выявил серьезных токсических воздействий на печень. Та же группа, также в 2012 г., сообщила, что 2 ', 4'-BNANCАналог [NMe] при использовании в антисмысловых олигонуклеотидах показал значительно более сильную ингибирующую активность, которая более выражена в более коротких (13–16-членных) олигонуклеотидах. Их данные привели исследователей к выводу, что 2 ', 4'-BNANCАналог [NMe] может быть лучшей альтернативой обычным LNA.
Преимущества технологии BNA
Некоторые из преимуществ BNA включают в себя идеальное обнаружение коротких РНК и ДНК-мишеней; повысить термостойкость дуплексов; способны различать отдельные нуклеотиды; повышает термостойкость триплексов; устойчивость к экзо- и эндонуклеазам, что обеспечивает высокую стабильность in vivo и in vitro Приложения; повышенная целевая специфичность; способствовать нормализации Tm; вторжение нити позволяет обнаруживать «труднодоступные» образцы; совместим со стандартными ферментативными процессами.[нужна цитата ]
Применение технологии BNA
Применение BNA включает исследование малых РНК; дизайн и синтез РНК-аптамеров; миРНК; антисмысловые зонды; диагностика; изоляция; микроматричный анализ; Нозерн-блоттинг; ПЦР в реальном времени; на месте гибридизация; функциональный анализ; Обнаружение и использование SNP в качестве антигенов и многие другие приложения на основе нуклеотидов.[нужна цитата ]
Рекомендации
- ^ Сэнгер, В. (1984) Принципы структуры нуклеиновой кислоты, Спрингер-Верлаг, Нью-Йорк, ISBN 3-540-90761-0.
- ^ а б Обика, С .; Nanbu, D .; Hari, Y .; Morio, K. I .; In, Y .; Ishida, T .; Иманиши, Т. (1997). «Синтез 2'-O, 4'-C-метиленуридина и -цитидина. Новые бициклические нуклеозиды с фиксированным C3, -эндо-сахарным сморщиванием». Буквы Тетраэдра. 38 (50): 8735. Дои:10.1016 / S0040-4039 (97) 10322-7.
- ^ Обика, С .; Онода, М .; Andoh, K .; Imanishi, J .; Morita, M .; Коидзуми, Т. (2001). «3'-амино-2 ', 4'-BNA: новые мостиковые нуклеиновые кислоты, имеющие фосфорамидатную связь N3' -> P5 '». Chemical Communications (Кембридж, Англия) (19): 1992–1993. Дои:10.1039 / b105640a. PMID 12240255.
- ^ Обика, Сатоши; Хари, Ёсиюки; Секигучи, Мицуаки; Иманиши, Такеши (2001). «2 ', 4'-мостиковая нуклеиновая кислота, содержащая 2-пиридон в качестве нуклеооснования: эффективное распознавание прерывания C⋅G посредством образования триплекса с пиримидиновым мотивом». Angewandte Chemie International Edition. 40 (11): 2079. Дои:10.1002 / 1521-3773 (20010601) 40:11 <2079 :: AID-ANIE2079> 3.0.CO; 2-Z.
- ^ Morita, K .; Hasegawa, C .; Канеко, М .; Tsutsumi, S .; Sone, J .; Ishikawa, T .; Иманиши, Т .; Коидзуми, М. (2001). «2'-O, 4'-C-этиленовые мостиковые нуклеиновые кислоты (ENA) с устойчивостью к нуклеазам и высоким сродством к РНК». Исследования нуклеиновых кислот. Добавка. 1 (1): 241–242. Дои:10.1093 / nass / 1.1.241. PMID 12836354.
- ^ Hari, Y .; Обика, С .; Сэкигучи, М .; Иманиши, Т. (2003). «Селективное распознавание прерывания CG 2 ', 4'-BNA, имеющим 1-изохинолон в качестве азотистого основания в образовании триплекса пиримидинового мотива». Тетраэдр. 59 (27): 5123. Дои:10.1016 / S0040-4020 (03) 00728-2.
- ^ а б Рахман, С. М. А .; Seki, S .; Обика, С .; Haitani, S .; Мияшита, К .; Иманиши, Т. (2007). «Высокостабильное образование триплекса пиримидин-мотив при физиологических значениях pH с помощью аналога нуклеиновой кислоты с мостиковой связью». Angewandte Chemie International Edition. 46 (23): 4306–4309. Дои:10.1002 / anie.200604857. PMID 17469090.
- ^ Кошкин, А. А .; Сингх, С. К .; Nielsen, P .; Раджванши, В.К .; Kumar, R .; Meldgaard, M .; Olsen, C.E .; Венгель, Дж. (1998). «LNA (заблокированные нуклеиновые кислоты): синтез мономеров бициклонуклеозидов аденина, цитозина, гуанина, 5-метилцитозина, тимина и урацила, олигомеризация и беспрецедентное распознавание нуклеиновых кислот». Тетраэдр. 54 (14): 3607. Дои:10.1016 / S0040-4020 (98) 00094-5.
- ^ Коидзуми, М. (2006). «Олигонуклеотиды ENA в качестве терапевтических средств». Современное мнение о молекулярной терапии. 8 (2): 144–149. PMID 16610767.
внешняя ссылка
- https://web.archive.org/web/20130126055902/http://www.rockefeller.edu/labheads/tuschl/sirna.html
- http://www.sanger.ac.uk/resources/software/
- Pfundheller, Henrik M .; Ломхольт, Кристиан (2002). Текущие протоколы в химии нуклеиновых кислот. Текущие протоколы в химии нуклеиновых кислот. Глава 4. С. 4.12.1–4.12.16. Дои:10.1002 / 0471142700.nc0412s08. ISBN 978-0471142706. PMID 18428894.