Спектроскопия микрофлюидной модуляции - Microfluidic modulation spectroscopy

Спектроскопия микрофлюидной модуляции (MMS) - это ИК-спектроскопия техника, которая используется для характеристики вторичная структура белков. Инфракрасная (ИК) спектроскопия хорошо известен этим приложением.[1]. Однако отсутствие автоматизации, повторяемости и динамического диапазона обнаружения на обычных платформах, таких как FTIR, были основными ограничениями, которые были устранены с развитием спектроскопии микрофлюидной модуляции.

Аналитические методы биофизической характеристики

Спектроскопия кругового дихроизма (CD) - это метод характеристики вторичной структуры. CD полезен для анализа α-спиральных белков из-за интенсивного сигнала, обеспечиваемого структурами α-спирали в области CD. Инфракрасная спектроскопия с преобразованием Фурье Деконволюция вторичной структуры (FTIR) также используется для методов многомерного анализа, включая разложение по сингулярным значениям, частичные наименьшие квадраты, мягкое независимое моделирование аналогии классов и нейронные сети.[2]

У CD, как и у обычного FTIR, есть существенные недостатки. Измерение необходимо проводить при низких концентрациях, обычно 0,5 мг / мл, но вплоть до 0,1 мг / мл, что может подорвать полученные данные. Присутствие некоторых вспомогательных веществ в буфере для состава также может мешать измерениям. КД и обычный FTIR также не обладают чувствительностью при характеристике белков биофармацевтических препаратов, таких как иммуноглобулины IgG1 и IgG2.[3] Спектроскопия с микрожидкостной модуляцией - это автоматизированный метод, который преодолевает эти проблемы, связанные как с FTIR, так и с CD, для использования в характеристике биофармацевтических продуктов.[4]

Приложения

Оценка структуры высшего порядка

Характеристика белковые структуры высшего порядка обычно выполняется в течение жизненного цикла разработки биологического продукта.[5] Поскольку биологическая функция связана со структурой, важно установить, что биологический препарат производится с ожидаемой структурой ( моноклональное антитело создается с ожидаемым β-листом, например α-спиралью). Также важно продемонстрировать, что на структуру не оказывают значительного влияния изменения в производстве лекарственных веществ или лекарственных препаратов, возникающие в процессе разработки продукта. Чувствительность и точность спектроскопии с микрожидкостной модуляцией позволяет обнаруживать структурные изменения более высокого порядка в составе и при интересующей концентрации без необходимости разбавления или дейтерирования. Этот метод предоставляет информацию о том, какие структурные мотивы в молекуле белка изменяются, что дает больше рекомендаций при разработке стабильных молекул белка и составов.

Биоподобие

Биоподобный Разработка лекарств - важное приложение для сравнения структур более высокого порядка. В аналитических исследованиях сходства структура инновационного продукта более высокого порядка сравнивается с биоподобным, чтобы установить сходство в структурах. Сопоставимость и биоподобие Исследования часто используют спектроскопию микрофлюидной модуляции для оценки продуктов на предмет структурных различий. Этот метод выявляет очень небольшие конформационные различия между разными белками и предоставляет информацию о том, где эти различия происходят. Эти возможности делают спектроскопию микрожидкостной модуляции мощным инструментом в анализе и разработке биоаналоги.

Агрегация

Агрегация белков это процесс, с помощью которого белки начинают связываться друг с другом в разных условиях и в разных составах. Если лечебные белки должны быть безопасными и эффективными, их поведение при неправильной укладке и агрегировании должно быть хорошо изучено[6]. Как восходящая, так и последующая обработка могут вызвать агрегацию, общий индикатор нестабильности белка, что может привести к тому, что терапевтический продукт будет непригоден для запуска.

Спектроскопия микрожидкостной модуляции может измерять ранее необнаруживаемые изменения в структурный белок атрибуты, изменения, которые имеют решающее значение для эффективности и качества лекарств[7]. Это один из немногих методов, который может напрямую контролировать образование агрегатов благодаря его способности измерять межмолекулярные структуры бета-листов.

Разработка рецептуры

Детальное понимание механизмов агрегирование необходим для контроля стабильности и обеспечения безопасного и эффективного лекарственного препарата. Основная мотивация при разработке - понять эти механизмы, что обусловлено высокой пропускной способностью анализа и интенсивным сбором информации.

Специалисты по разработке рецептур используют базовый набор аналитических методов для количественной оценки параметров коллоидной, химической и конформационной стабильности, которые определяют стабильность биотерапевтического препарата. Однако это набор инструментов с широко признанными пробелами, в частности невозможностью измерить конформационные различия с высокой воспроизводимостью в клинически репрезентативных составах. По причинам, упомянутым ранее, спектроскопия с микрофлюидной модуляцией обеспечивает емкость образца за счет работы 96-луночного планшета и технические возможности для выяснения коллоидной и химической стабильности, чего не хватает в существующих методах, таких как эксклюзионная хроматография (SEC), масс-спектрометрии и капиллярный электрофорез.

Гарантия качества (лаборатории, соответствующие GMP / CFR)

Эффективное тестирование качества служит гарантией качества продукции, контролируя критические изменения в структуре лекарственных веществ, лекарственных продуктов, сырья или вспомогательных веществ. Обеспечение качества (QA) - это систематический подход, который устанавливает набор руководящих принципов для всех аспектов производственного процесса, которые могут повлиять на качество продукта.

Биологические препараты - это сложные молекулы, которые проявляют микрогетерогенность, незначительные химические отклонения, такие как гликан структурные отличия, дезамидирование, окисление и гликирование. Создание широкой аналитической сети помогает установить надежные взаимосвязи между структурой и функцией, которые определяют границы неприемлемого риска. Идентификация всех возможных критических атрибутов качества (CQA) лежит в основе эффективного QA. Спектроскопия микрожидкостной модуляции облегчает измерение атрибутов вторичной структуры биофармацевтические препараты на всех этапах производственного процесса. Это помогает установить параметры качества на этапах, невозможных с использованием традиционных методов.

Количественное определение

В структура белков и их поведение в растворе зависит от концентрации. Точное количественное определение концентрации обеспечивает лучший анализ и сравнение результатов между различными белками и составами. Общий аналитический подход к количественному определению отсутствует из-за ограничений традиционных методов (например, ограниченный динамический диапазон традиционных спектроскопических инструментов (например, ограниченное разрешение и линейность детектора). Поскольку оптическая плотность образца ориентирована на очень ограниченный динамический диапазон, это вынуждает ученым необходимо предпринять дополнительные шаги для регулировки концентрации образца или длины клеточного пути для достижения точного количественного определения белка.

Спектроскопия с микрожидкостной модуляцией обеспечивает прямое количественное определение белка без метки в широком диапазоне концентраций и является более селективным, чем традиционные инструменты для спектроскопии, с меньшей чувствительностью к помехам. Спектроскопия с микрожидкостной модуляцией увеличивает чувствительность и значительно снижает ошибки, характерные для традиционной спектроскопии.

Составные части

В спектроскопии с микрожидкостной модуляцией используется настраиваемый квантовый каскадный лазер среднего инфракрасного диапазона для генерации оптического луча, который в 1000 раз ярче, чем те, которые используются в обычных FTIR. Это позволяет измерять образцы с более высокой концентрацией, чем это возможно при использовании других методов, и использовать более простые детекторы без необходимости охлаждения азотом. Лазер работает в режиме непрерывной волны для генерации очень высокого разрешения (ширина линии <0,001 см-1), малошумящего луча с минимальным рассеянным светом, который фокусируется через микрожидкостную передающую ячейку с короткой (25 мкм) длиной оптического пути на Ртутно-кадмиево-теллуровый (КРТ) детектор с термоэлектрическим охлаждением. Эта оптическая конфигурация обеспечивает высокую чувствительность измерения в диапазоне концентраций от 0,1 до 200 мг / мл для структурной характеристики и до 0,01 мг / мл для количественного определения белка, что дает спектроскопии с микрофлюидной модуляцией гораздо более широкий динамический диапазон, чем альтернативные методы определения характеристик белков.

В спектроскопии с микрожидкостной модуляцией раствор образца (белок в буфере) и соответствующий эталонный поток буфера вводятся в передающую ячейку при непрерывном потоке, а затем быстро модулируются (1-10 Гц) по пути лазерного луча для получения почти дрейфующего Свободное, с компенсацией фона, дифференциальное сканирование полосы Amide I. Вся оптическая система герметична и продувается сухим воздухом, чтобы свести к минимуму любые помехи от водяного пара из атмосферы, который поглощается в диапазоне волновых чисел 2000-1300 см-1 и, следовательно, может затруднить использование ИК-спектроскопия для характеристики белков. Усовершенствованная технология обработки сигналов является третьим ключевым элементом прибора и преобразует необработанные спектры в данные о долевом вкладе конкретных мотивов вторичной структуры, обеспечивая структурный отпечаток белка.

Рекомендации

  1. ^ W. Wang и C.J. Roberts, Агрегация терапевтических белков (Wiley, 2010), A. Elliott и E.J. Ambrose, Nature 165, 921–922 (1950), H. Susi и D.M. Byler, методы Enzymol. 130, 290–311 (1986), W. K. Surewicz и H.H. Mantsch, Biochim. Биофиз. Acta 952, 115–130 (1988), A. Dong, P. Huang и W.S. Caughey, Biochemistry 29 (13) 3303–3308 (1990), S.J. Престрельски, А.Л.Уильямс-младший и М.Н. Либман, Функция структуры белков и биоинформатика 14 (4) 440–450 (1992), W. K. Surewicz, H.H. Mantsch, D. Chapman, Biochemistry 32 (2) 389–394 (1993), J.L.R. Arrondo и др., Prog. Биофиз. Мол. Биол. 59 (1) 23–56 (1993)
  2. ^ S. Vonhoff, J. Condliffe, H. Schiffter J Pharm Biomed Anal, 51 (1) (2010), стр. 39-45
  3. ^ J. Wen и др., J. Pharm. Sci. 109 (1) 247– 253 (2020)
  4. ^ Э. Ма, Л. Ван, Б. Кендрик, Спектроскопия 33 (7) 46–52 (2018)
  5. ^ Брент Кендрик, Джон П. Габриельсон, Кэролайн Уорли Солсберг, Юджин Ма, Либо Ван Дж. Из фармацевтических наук, 109 (1), 2020, 933-936
  6. ^ Робертс, CJ. Trends Biotechnol. 2014; 32: 372–380
  7. ^ Ма Э, Ван Л. и Кендрик Б. Спектроскопия 2018; 33: 46–52