Органная ванна - Organ bath

Не путать с Техника изолированной перфузии органов.

Схема типичного приготовления органной ванны. Иссеченный кусок гладкой мышечной ткани помещается в насыщенный кислородом раствор в камере. Ткань прикреплена к рычагу, который передает свое сокращение на миограф, таким образом регистрируя физиологический ответ. Исследуемые препараты можно вводить прямо в камеру.

An камера органа, органная ванна, или же изолированная тканевая ванна это камера, в которой можно вводить изолированные органы или ткани с наркотики, или стимулировали электрически, чтобы измерить их функцию. Ткани в ванне для органов обычно насыщаются кислородом карбоген и хранится в растворе, например Решение Тирода или же раствор Рингера с лактатом.^{[нужна цитата ]} Исторически их еще называли кишечные ванны.^[1]

Он используется в фармакология исследования, особенно при изучении сокращения гладкая мышца в тканях, таких как подвздошная кишка,^[2] двоеточие,^[3] семявыносящий проток,^[4] трахея,^[5] мочевой пузырь,^[6] кавернозное тело,^[7] и кровеносные сосуды, такие как аортальный кольца. Сокращение гладких мышечных тканей можно легко измерить с помощью миограф; этот тип физиологической реакции легче поддается количественной оценке, чем у других тканей. Органные ванны изначально были разработаны для изучения воздействия агонисты и антагонисты на возбудимых тканях, таких как нервная ткань и мышца хотя они были адаптированы для изучения таких тканей, как эпителий.^[8] Типичные ткани и рецепторы, изученные с препаратами для ванн для органов, включают: никотиновый, мускариновый и гистаминовые рецепторы в подвздошная кишка или же бета-адренорецепторы в мочевой пузырь.^[8] Ткани обычно берут из грызуны, Такие как морские свинки, мышей и крысы.

Для изучения эффектов наркотики на рецепторы в открытие лекарств и комбинаторная химия, новые техники, такие как грохочение с высокой пропускной способностью, скрининг со сверхвысокой пропускной способностью и скрининг высокого содержания, фармакогеномика,протеомика и технологии массивов в значительной степени вытеснили использование ванн для органов.^[9] Эти методы могут обеспечить большую рецепторную специфичность, чем препараты для ванн для органов, поскольку один образец ткани может выражать множество различных типов рецепторов.^{[нужна цитата ]}

Использование препаратов для ванн для органов для измерения физиологических реакций тканей на концентрации лекарств позволяет генерировать кривые доза-ответ. Это, в свою очередь, позволяет количественно оценить фармакологический профиль препарата в рассматриваемой ткани, например, вычислить его EC50, IC50, и Коэффициент Хилла.^{[нужна цитата ]}

Исторический вклад

Примеры важного вклада, внесенного с помощью этой техники, включают:

• Открытие 1921 г. Отто Леви из Vagusstoff использование лягушачьих сердец привело к идентификации ацетилхолин как первый нейротрансмиттер.^[10]
• Энкефалин с использованием биоанализов, таких как мышь семявыносящий проток как биоанализ.^[11]
• Оксид азота с использованием обоих методов анализа пениса-ретрактора быка и кольца аорты.^[12]

Рекомендации

1. Хэндли, Шейла Л .; Сингх, Лакбир (январь 1986 г.). «Нейротрансмиттеры и тряска - больше, чем« кишечная ванна »для мозга?». Тенденции в фармакологических науках. 7: 324–328. Дои:10.1016/0165-6147(86)90371-8.
2. Альбукерке, AA; Карвалью, штат Монтана; Эвора, ПМ; де Надаи, TR; Celotto, AC; Эвора, PR (июнь 2016 г.). «Реактивность in vitro (« камера органа ») трахеальных колец морской свинки - соображения методологии». Анналы трансляционной медицины. 4 (11): 216. Дои:10.21037 / атм.2016.05.18. ЧВК  4916363. PMID  27386490.
3. Briejer, MR; Аккерманс, Л. М.; Schuurkes, JA (1995). «Взаимодействие серотонина с множественными рецепторами и нейротрансмиттерами в изолированной толстой кишке морских свинок». Archives Internationales de Pharmacodynamie et de Thérapie. 329 (1): 121–33. PMID  7639614.
4. Burnstock, G; Верхратский А (март 2010). «Семявыносящий проток - модель, используемая для установления симпатической котрансмиссии». Тенденции в фармакологических науках. 31 (3): 131–9. Дои:10.1016 / j.tips.2009.12.002. PMID  20074819.
5. Спина, Д. (июнь 2002 г.). «Нервы дыхательных путей: выброс нейромедиатора». Текущее мнение в фармакологии. 2 (3): 283–5. Дои:10.1016 / S1471-4892 (02) 00160-1. PMID  12020471.
6. Фрай, CH (2004). «Экспериментальные модели для изучения физиологии, патофизиологии и фармакологии нижних мочевыводящих путей». Журнал фармакологических и токсикологических методов. 49 (3): 201–10. Дои:10.1016 / j.vascn.2004.03.002. PMID  15172016.
7. Донг, Q; Дэн, S; Wang, R; Юань, Дж (февраль 2011 г.). «Модели животных in vitro и in vivo в исследованиях приапизма». Журнал сексуальной медицины. 8 (2): 347–59. Дои:10.1111 / j.1743-6109.2010.02052.x. PMID  20946160.
8. Лэнгтон, Филип Д. (2012). Основное руководство по чтению биомедицинских статей.
9. Фогель, Ганс (2008). Открытие и оценка лекарств: фармакологические анализы (3-е изд.). С. 9–10. ISBN  978-3-540-70995-4.
10. Беннет, Макс Р. (март 2000 г.). «Концепция рецепторов передатчика: 100 лет спустя». Нейрофармакология. 39 (4): 523–546. Дои:10.1016 / S0028-3908 (99) 00137-9. PMID  10728874.
11. Голдберг, Джефф (2013). Анатомия научного открытия: гонка за собственный морфин в организме. Skyhorse Publishing. ISBN  9781626361935.
12. Мартин, В. (октябрь 2009 г.). «Роберт Ф. Ферчготт, лауреат Нобелевской премии (1916-2009) - личное размышление». Британский журнал фармакологии. 158 (3): 633–7. Дои:10.1111 / j.1476-5381.2009.00418.x. ЧВК  2765585. PMID  19681890.