Шунтирование рибосом - Ribosome shunting

Шунтирование рибосом это механизм перевод инициация, в которой рибосомы обходить или «шунтировать» части 5 'непереведенный регион чтобы добраться до старта кодон, позволяя вирусам получать больше информации, чем обычно, в мРНК молекула. Было показано, что некоторые вирусные РНК используют шунтирование рибосом как более эффективную форму трансляции на определенных этапах жизненного цикла вируса или когда факторы инициации трансляции недостаточны (например, расщепление вирусными протеазами). Некоторые вирусы, которые, как известно, используют этот механизм, включают аденовирус, вирус Сендай, вирус папилломы человека, параретровирус гепатита В уток, вирусы тунгробациллы риса и вирус мозаики цветной капусты. В этих вирусах рибосома непосредственно перемещается от вышележащего инициирующего комплекса к стартовому кодону (AUG) без необходимости раскручивать вторичные структуры РНК.[1]

Шунтирование рибосом в вирусе мозаики цветной капусты

Трансляция 35S РНК вируса мозаики цветной капусты (CaMV) инициируется рибосомным шунтом.[2] 35S РНК CaMV содержит лидерную последовательность ~ 600nt, которая содержит 7-9 коротких открытых рамок считывания (кОРС) в зависимости от штамма. Эта длинная лидерная последовательность может образовывать обширную сложную структуру «стебель-петля», которая является ингибирующим элементом для экспрессии следующих ORF. Однако обычно наблюдалась трансляция ORF ниже лидера 35S РНК CaMV.[3] Модель шунтирования рибосом показывает, что при взаимодействии факторов инициации рибосомы начинают сканирование с закрытого 5’-конца и сканируют на короткое расстояние, пока не попадут в первую кОРС.[4] Структура шпильки, образованная лидером, переносит первую длинную ORF в близкую пространственную окрестность 5’-проксимальной кОРС.[5] После прочтения кОРС A сканирующая рибосома 80S разбирается на стоп-кодоне, который является местом оттока шунта. Субъединицы 40S рибосом продолжают связываться с РНК и обходят прочный структурный элемент «стебель-петля», приземляются на акцепторный сайт шунта, возобновляют сканирование и повторно инициируют первую длинную ORF. 5’-проксимальный кОРС A и сама структура стержень-петля являются двумя важными элементами для шунтирования CaMV [5]. кОРС с 2-15 кодонами и 5-10 нуклеотидами между стоп-кодоном кОРС и основанием структуры стебля являются оптимальными для шунтирования рибосом, в то время как минимальная (старт-стопная) ОРС не способствует шунтированию.[6]

Шунтирование рибосом при параретровирусе тунгробацилформной формы риса

Процесс шунтирования рибосом был впервые обнаружен у CaMV в 1993 году, а затем был описан в вирусе тунгро-бациллоформ риса (RTBV) в 1996 году.[7] Механизм шунтирования рибосом в RTBV напоминает таковой в CaMV: он также требует первой короткой ORF, а также следующей сильной вторичной структуры. Обмен консервативных шунтирующих элементов между CaMV и RTBV показал важность нуклеотидного состава посадочной последовательности для эффективного шунтирования, указывая на то, что механизм шунтирования рибосом является эволюционно консервативным у параретровирусов растений.[8]

Шунтирование рибосом при вирусе Сендай

Белки Y вируса Сендай инициируются шунтированием рибосом. Среди 8 первичных продуктов трансляции мРНК P / C вируса Сендай сканирование с утечкой учитывает трансляцию белков C ’, P и C, в то время как экспрессия белков Y1 и Y2 инициируется посредством прерывистого сканирования рибосомного шунта. Сканирующий комплекс входит в 5 ’кэп и сканирует ~ 50 нуклеотидов 5’ UTR, а затем переносится на акцепторный сайт на инициирующих кодонах Y или закрывает их. В случае вируса Сендай не требуется никаких конкретных последовательностей донорского сайта.[9][10]

Рибосомный шунт при аденовирусе

Шунтирование рибосом наблюдается во время экспрессии мРНК поздних аденовирусов. МРНК позднего аденовируса содержат 5'-тройной лидер, высококонсервативный 200-нуклеотидный NTR с неструктурированной 5'-конформацией от 25 до 44 нуклеотидов, за которым следует сложная группа стабильной шпилечной структуры, которая обеспечивает предпочтительную трансляцию за счет снижения потребности в eIF. -4F (белковый комплекс, связывающий кэп), который инактивируется аденовирусом, препятствуя трансляции клеточного белка. Когда eIF4E много, выполняется как линейное сканирование, так и шунтирование; однако, когда eIF4E изменяется или деактивируется во время поздней аденовирусной инфекции теплового шока, трехсторонний лидер исключительно и эффективно направляет инициацию путем шунтирования.[11]

В то время как аденовирусу требовалась тирозинкиназа для инфицирования клеток без нее, разрушая комплекс кэп-инициации, известный как трехсторонний лидер. Он нарушает этот процесс за счет шунтирования рибосом и фосфорилирования тирозина. Есть два ключевых места связывания рибосомы. При трансляции вирусной мРНК и подавлении трансляции при кэпировании процесса шунтирования рибосом. [12]В случае поздней мРНК аденовируса и мРНК hsp70, вместо распознавания стоп-кодона первой короткой ORF, приостановка трансляции вызывается сканированием рибосомы с помощью трех консервативных последовательностей, которые комплементарны 3’-шпильке 18S рибосомной РНК.[13] Механизм рибосомного шунтирования включает связывание большей субъединицы перед стартовым кодоном. Затем полимераза способна «перепрыгивать», используя связывание с белком и силовой удар, чтобы обойти стартовый кодон на кодирующей мРНК. Затем тройник вставляется в родительскую цепь для создания нового сайта связывания для дальнейшей репликации.

Рекомендации

  1. ^ Edgil, D; Polacek, C; Харрис, Э (2006). «Вирус денге использует новую стратегию инициации трансляции, когда кэп-зависимая трансляция ингибируется». Журнал вирусологии. 80 (6): 2976–86. Дои:10.1128 / JVI.80.6.2976-2986.2006. ЧВК  1395423. PMID  16501107.
  2. ^ Фюттерер, Йоханнес; Кисс-Ласло, Жужанна; Хон, Томас (1993). «Нелинейная миграция рибосом на 35S РНК вируса мозаики цветной капусты». Клетка. 73 (4): 789–802. Дои:10.1016 / 0092-8674 (93) 90257-Q. PMID  8500171.
  3. ^ Домингес, Д.И.; Рябова, Л.А.; Пуггин, ММ; Schmidt-Puchta, W; Fütterer, J; Хон, Т. (1998). «Шунтирование рибосом в вирусе мозаики цветной капусты. Идентификация необходимого и достаточного структурного элемента». Журнал биологической химии. 273 (6): 3669–78. Дои:10.1074 / jbc.273.6.3669. PMID  9452497.
  4. ^ Рябова, Любовь А .; Пуггин, Михаил М .; Хон, Томас (2006). «Повторная инициализация трансляции и сканирование с утечками в растительных вирусах». Вирусные исследования. 119 (1): 52–62. Дои:10.1016 / j.virusres.2005.10.017. PMID  16325949.
  5. ^ Пуггин, ММ; Fütterer, J; Скрябин, КГ; Хон, Т. (1999). «Короткая открытая рамка считывания, оканчивающаяся перед стабильной шпилькой, является консервативным признаком прегеномных РНК-лидеров параретровирусов растений». Журнал общей вирусологии. 80 (8): 2217–28. Дои:10.1099/0022-1317-80-8-2217. PMID  10466822.
  6. ^ Пуггин, ММ; Хон, Т; Фюттерер, J (2000). «Роль короткой открытой рамки считывания в рибосомном шунте на лидере РНК вируса мозаики цветной капусты». Журнал биологической химии. 275 (23): 17288–96. Дои:10.1074 / jbc.M001143200. PMID  10747993.
  7. ^ Fütterer, J; Потрикус, I; Бао, Y; Ли, Л; Бернс, ТМ; Hull, R; Хон, Т. (1996). «Позиционно-зависимое инициирование ATT во время трансляции растительного параретровируса рисового тунгробациллоформного вируса». Журнал вирусологии. 70 (5): 2999–3010. ЧВК  190159. PMID  8627776.
  8. ^ Pooggin, M. M .; Рябова, Л.А.; Он, Х; Fütterer, J; Хон, Т. (2006). «Механизм шунтирования рибосом у тунгробациллоформного параретровируса риса». РНК. 12 (5): 841–50. Дои:10.1261 / rna.2285806. ЧВК  1440904. PMID  16556934.
  9. ^ Де Брейн, S; Simonet, V; Пелет, Т; Курран, Дж (2003). «Идентификация цис-действующего элемента, необходимого для шунтирующей инициации трансляции белков Y вируса Сендай». Исследования нуклеиновых кислот. 31 (2): 608–18. Дои:10.1093 / nar / gkg143. ЧВК  140508. PMID  12527769.
  10. ^ Latorre, P; Колаковский, Д; Курран, Дж (1998). «Белки Y вируса Сендай инициируются рибосомным шунтом». Молекулярная и клеточная биология. 18 (9): 5021–31. Дои:10.1128 / mcb.18.9.5021. ЧВК  109087. PMID  9710586.
  11. ^ Юэ, А; Шнайдер, Р.Дж. (1996). «Селективная инициация трансляции путем прыжка рибосом в инфицированных аденовирусом и подвергнутых тепловому шоку клетках». Гены и развитие. 10 (12): 1557–67. Дои:10.1101 / gad.10.12.1557. PMID  8666238.
  12. ^ Си, Квиарон (2005). «Регуляция трансляции с помощью шунтирования рибосом посредством фосфотирозин-зависимого связывания аденовирусного белка 100k с вирусными мРНК». Журнал вирусологии. 14 (9): 5676–5683.
  13. ^ Юэ, А; Шнайдер, Р.Дж. (2000). «Трансляция рибосомным шунтированием на мРНК аденовируса и hsp70, чему способствует комплементарность к 18S рРНК». Гены и развитие. 14 (4): 414–21. ЧВК  316380. PMID  10691734.