Синтез пептидов - Peptide synthesis

Сцепление двух аминокислоты в растворе. Незащищенный амин одного реагирует с незащищенной группой карбоновой кислоты другого с образованием пептидная связь. В этом примере вторая реакционная группа (амин / кислота) в каждом из исходных материалов несет защитная группа.

В органическая химия, пептидный синтез это производство пептиды, соединения, в которых несколько аминокислоты связаны через амидные связи, также известные как пептидные связи. Пептиды химически синтезируются реакцией конденсации карбоксильная группа одной аминокислоты на аминогруппа другого. Охраняющая группа стратегии обычно необходимы для предотвращения нежелательных побочных реакций с различными боковыми цепями аминокислот.[1] Химический синтез пептидов чаще всего начинается с карбоксильного конца пептида (С-конец) и продолжается по направлению к амино-концу (N-конец).[2] Биосинтез белков (длинные пептиды) у живых организмов происходит в обратном направлении.

Химический синтез пептидов может осуществляться с использованием классических методов растворной фазы, хотя в большинстве исследований и разработок они были заменены твердофазными методами (см. Ниже).[3] Однако синтез в фазе раствора сохраняет свою полезность в крупномасштабном производстве пептидов для промышленных целей.

Химический синтез облегчает производство пептидов, которые трудно экспресс в бактериях включение неприродных аминокислот, модификация пептидного / белкового остова и синтез D-белков, которые состоят из D-аминокислоты.

Твердофазный синтез

Установленный метод производства синтетических пептидов в лаборатории известен как твердофазный пептидный синтез (SPPS).[2] Первопроходец Роберт Брюс Меррифилд,[4][5] SPPS обеспечивает быструю сборку пептидной цепи посредством последовательных реакций производных аминокислот на нерастворимом пористом носителе.

Твердая подложка состоит из небольших шариков полимерной смолы, функционализированных реакционноспособными группами (такими как аминогруппы или гидроксильные группы), которые связаны с формирующейся пептидной цепью.[2] Поскольку пептид остается ковалентно прикрепленным к подложке на протяжении всего синтеза, избыток реагентов и побочных продуктов можно удалить промыванием и фильтрацией. Этот подход позволяет обойти сравнительно трудоемкое выделение пептида-продукта из раствора после каждой стадии реакции, которое может потребоваться при использовании обычного синтеза в фазе раствора.

Каждая аминокислота, которая должна быть связана с N-концом пептидной цепи, должна быть защищенный на его N-конце и боковой цепи с использованием соответствующих защитных групп, таких как Boc (кислотоустойчивый) или Fmoc (лабильно по основанию), в зависимости от боковой цепи и используемой стратегии защиты (см. ниже).[1]

Общая процедура SPPS представляет собой один из повторяющихся циклов альтернативных реакций снятия защиты с N-конца и связывания. Смолу можно промывать между каждым этапом.[2] Сначала к смоле присоединяется аминокислота. Затем с амина снимают защиту и затем связывают со свободной кислотой второй аминокислоты. Этот цикл повторяется до тех пор, пока не будет синтезирована желаемая последовательность. Циклы SPPS могут также включать этапы кэппинга, которые блокируют реакцию концов непрореагировавших аминокислот. В конце синтеза неочищенный пептид отщепляется от твердой подложки с одновременным удалением всех защитных групп с использованием реагента сильных кислот, таких как трифторуксусная кислота или нуклеофил.[2] Неочищенный пептид можно осаждать из неполярного растворителя, такого как диэтиловый эфир, для удаления органических растворимых побочных продуктов. Неочищенный пептид можно очистить, используя обращенно-фазовая ВЭЖХ.[6] Процесс очистки, особенно более длинных пептидов, может быть трудным, потому что необходимо удалить небольшие количества нескольких побочных продуктов, которые очень похожи на продукт. По этой причине так называемые процессы непрерывной хроматографии, такие как MCSGP все чаще используются в коммерческих целях для максимального увеличения выхода без ущерба для уровня чистоты.[7]

SPPS ограничен выход реакции, и обычно пептиды и белки в диапазоне 70 аминокислот расширяют пределы синтетической доступности.[2] Синтетическая сложность также зависит от последовательности; обычно склонные к агрегации последовательности, такие как амилоиды[8] сделать сложно. Доступ к более длинным длинам можно получить с помощью таких подходов к лигированию, как нативная химическая перевязка, где два более коротких синтетических пептида с полной удаленной защитой могут быть объединены в раствор.

Реагенты для связывания пептидов

Важной особенностью, позволившей широкое применение SPPS, является получение чрезвычайно высоких выходов на стадии связывания.[2] Высокоэффективный амид Требуются условия образования связи.[9][10][11] и добавление избытка каждой аминокислоты (от 2 до 10 раз). Минимизация аминокислот рацемизация во время сцепления также жизненно важно избегать эпимеризация в конечном пептидном продукте.

Образование амидной связи между амином и карбоновой кислотой медленный, и для этого обычно требуются «связывающие реагенты» или «активаторы». Существует широкий спектр связывающих реагентов, отчасти из-за их различной эффективности для конкретных соединений,[12][13] многие из этих реагентов коммерчески доступны.

Карбодиимиды

Амид образование связи с использованием DIC / HOBt.[11]

Карбодиимиды такие как дициклогексилкарбодиимид (DCC) и диизопропилкарбодиимид (DIC) часто используются для образования амидной связи.[11] Реакция протекает через образование высокореакционноспособного О-acylisoмочевина. Этот реакционноспособный интермедиат атакует N-концевой амин пептида, образуя пептидную связь. Формирование О-acylisoмочевина быстрее всего протекает в неполярных растворителях, таких как дихлорметан.[14]

DIC особенно полезен для SPPS, поскольку в виде жидкости он легко распределяется, а мочевина побочный продукт легко смывается. И наоборот, родственный карбодиимид 1-этил-3- (3-диметиламинопропил) карбодиимид (EDC) часто используется для связывания пептидов в фазе раствора, поскольку побочный продукт мочевины может быть удален промыванием во время водной отработка.[11]

HOBt
HOAt
Соседний групповой эффект HOAt

Активация карбодиимида открывает возможность для рацемизация активированной аминокислоты.[11] Рацемизации можно избежать с помощью добавок, подавляющих рацемизацию, таких как триазолы 1-гидроксибензотриазол (HOBt) и 1-гидрокси-7-аза-бензотриазол (HOAt). Эти реагенты атакуют О-ацилизомочевина промежуточная с образованием активный эфир, который впоследствии вступает в реакцию с пептидом с образованием желаемой пептидной связи.[15] Этиловый циангидроксииминоацетат (Oxyma), добавка для карбодиимидного сцепления, действует как альтернатива HOAt.[16]

Соли аминия / урония и фосфония

Пептидные связующие реагенты на основе урония

Некоторые связывающие реагенты полностью исключают карбодиимид и включают фрагмент HOAt / HOBt в виде аминия / урония или фосфоний соль не-нуклеофильный анион (тетрафторборат или гексафторфосфат ).[10] Примеры аминий / урониевых реагентов включают: HATU (HOAt), HBTU /TBTU (HOBt) и HCTU (6-ClHOBt). HBTU и TBTU различаются только выбором аниона. Фосфониевые реагенты включают: PyBOP (HOBt) и ПяОП (HOAt).

Эти реагенты образуют такие же активные сложноэфирные формы, что и условия активации карбодиимида, но различаются скоростью начальной стадии активации, которая определяется природой углеродного скелета связывающего реагента.[17] Кроме того, реагенты аминий / уроний способны реагировать с N-концом пептида с образованием неактивного гуанидино побочный продукт, тогда как реагенты фосфония - нет.

Ангидрид пропанфосфоновой кислоты

С конца 2000-х гг. ангидрид пропанфосфоновой кислоты, продаваемый коммерчески под различными названиями, такими как «T3P», стал полезным реагентом для образования амидных связей в коммерческих приложениях. Он превращает кислород карбоновой кислоты в уходящую группу, побочные продукты пептидного связывания которой растворимы в воде и легко смываются. При сравнении характеристик ангидрида пропанфосфоновой кислоты и других пептидных связывающих реагентов для получения нонапептидного лекарственного средства было обнаружено, что этот реагент превосходит другие реагенты в отношении выхода и низкой эпимеризации.[18]

Твердые опоры

Сшитый полистирол - наиболее распространенная твердая подложка, используемая в SPPS.

Твердые носители для пептидного синтеза выбираются по физической стабильности, чтобы обеспечить быструю фильтрацию жидкостей. Подходящие носители инертны по отношению к реагентам и растворителям, используемым во время SPPS, хотя они должны набухать в используемых растворителях, чтобы обеспечить проникновение реагентов и позволить присоединение первой аминокислоты.[19]

Три основных типа твердых опор: опоры гелевого типа, опоры поверхностного типа и композиты.[19] Усовершенствования твердых носителей, используемых для синтеза пептидов, увеличивают их способность противостоять повторному использованию TFA во время стадии снятия защиты SPPS.[20] Используются две первичные смолы в зависимости от того, требуется ли карбоновая кислота на С-конце или амид. Смола Ванга по состоянию на 1996 г., наиболее часто используемая смола для пептидов с C-концевыми карбоновыми кислотами.[21][нуждается в обновлении ]

Схемы защиты групп

Как описано выше, использование N-концевой и боковой цепи защитные группы необходим во время синтеза пептидов, чтобы избежать нежелательных побочных реакций, таких как самосочетание активированной аминокислоты, приводящее к (полимеризация ).[1] Это будет конкурировать с предполагаемой реакцией связывания пептидов, что приведет к низкому выходу или даже к полной неспособности синтезировать желаемый пептид.

Два принципа ортогональный существуют схемы защитных групп для использования в твердофазном синтезе пептидов: так называемые Boc / Bzl и Fmoc /тБу подходит.[2] Стратегия Boc / Bzl использует TFA -лабильный N-конец Boc защита наряду с защитой боковой цепи, которая удаляется безводным фтороводород на заключительном этапе отщепления (с одновременным отщеплением пептида от твердой подложки). Fmoc / tBu SPPS использует лабильные основания Fmoc Защита N-конца с защитой боковой цепи и смоляной связью, которые неустойчивы к кислотам (окончательное кислотное расщепление осуществляется посредством обработки TFA).

Оба подхода, включая преимущества и недостатки каждого, более подробно описаны ниже.

Boc / Bzl SPPS

Основная статья: Трет-бутилоксикарбонильная защитная группа
Расщепление группы Boc

Первоначальный метод синтеза пептидов основывался на терт-бутилоксикарбонил (или проще говоря «Boc») в качестве временной N-концевой α-аминозащитной группы. Группа Boc удаляется кислотой, такой как трифторуксусная кислота (TFA). Это формирует положительно заряженную аминогруппу в присутствии избытка TFA (обратите внимание, что аминогруппа не протонирована на изображении справа), которая нейтрализуется и связывается с поступающей активированной аминокислотой.[22] Нейтрализация может происходить либо до соединения, либо на месте во время основной реакции сочетания.

Подход Boc / Bzl сохраняет свою полезность в восстановлении пептида агрегирование во время синтеза.[23] Кроме того, Boc / Bzl SPPS может быть предпочтительнее Fmoc /тПодход Bu при синтезе пептидов, содержащих чувствительные к основанию фрагменты (такие как депсипептиды ), так как обработка основанием требуется на стадии снятия защиты с Fmoc (см. ниже).

Постоянные защитные группы боковой цепи, используемые во время Boc / Bzl SPPS, обычно представляют собой группы на основе бензила или бензила.[1] Окончательное удаление пептида с твердой подложки происходит одновременно со снятием защиты с боковой цепи с использованием безводного фтороводород через гидролитическое расщепление. Конечный продукт представляет собой фторидную соль, которую относительно легко солюбилизировать. Мусорщики, такие как крезол должен быть добавлен к HF, чтобы предотвратить реактивную т-бутил катионы от образования нежелательных продуктов. Недостатком этого подхода является возможность разложения пептида фтористым водородом.

Fmoc /тБу СЭС

Смотрите также: Флуоренилметилоксикарбонильная защитная группа
Расщепление группы Fmoc. Обработка Fmoc-защищенного амина с помощью пиперидин приводит к отрыву протона от группа метина из флуоренил кольцевая система. Это приводит к высвобождению карбамат, который разлагается на диоксид углерода (CO2 ) и свободный амин. Дибензофульвен также генерируется. Эта реакция может происходить из-за кислотности флуоренил протон, возникающий в результате стабилизации ароматный образовался анион. В дибензофульвен побочный продукт может реагировать с нуклеофилы такие как пиперидин (который находится в большом избытке) или потенциально высвобожденный амин.[24]

Использование N-терминала Fmoc Защита позволяет использовать более мягкую схему снятия защиты, чем используется для SPPS Boc / Bzl, и эта схема защиты действительно ортогональна в условиях SPPS. Для снятия защиты Fmoc используется основание, обычно 20-50%. пиперидин в DMF.[19] Таким образом, подвергнутый воздействию амин является нейтральным, и, следовательно, не требуется нейтрализации пептид-смола, как в случае подхода Boc / Bzl. Отсутствие электростатического отталкивания между пептидными цепями может привести к повышенному риску агрегации с Fmoc /тНо СЭСЗ. Поскольку освобожденная флуоренильная группа является хромофором, снятие защиты с Fmoc можно контролировать по УФ-поглощению реакционной смеси, стратегия, которая используется в автоматических синтезаторах пептидов.

Способность группы Fmoc расщепляться в относительно мягких основных условиях при сохранении устойчивости к кислоте позволяет использовать защитные группы боковой цепи, такие как Boc и тBu, который может быть удален в более мягких кислых условиях окончательного расщепления (TFA), чем те, которые используются для окончательного расщепления в Boc / Bzl SPPS (HF). Падальщики, такие как вода и триизопропилсилан (TIPS) добавляют во время окончательного расщепления, чтобы предотвратить побочные реакции с реактивными катионными частицами, высвобождающимися в результате снятия защиты с боковой цепи. Полученный неочищенный пептид получают в виде соли TFA, которую потенциально труднее солюбилизировать, чем соли фторида, образующиеся в Boc SPPS.

Fmoc /тБу SPPS меньше атомно-экономичный, так как флуоренильная группа намного больше, чем группа Boc. Соответственно, цены на аминокислоты Fmoc были высокими до крупномасштабного пилотирования одного из первых синтезированных пептидных препаратов, энфувиртид, началась в 1990-х, когда рыночный спрос скорректировал относительные цены Fmoc- и Boc-аминокислот.

Другие защитные группы

Бензилоксикарбонил
Смотрите также: Карбоксибензил

Группа (Z) представляет собой другую аминозащитную группу карбаматного типа, впервые использованную Макс Бергманн в синтезе олигопептидов.[25] Удаляется в тяжелых условиях с помощью HBr в уксусная кислота, или более мягкие условия каталитического гидрирование. Хотя он периодически используется для защиты α-аминов при синтезе пептидов, он почти исключительно используется для защиты боковых цепей.

Группы Alloc и разные

Аллилоксикарбонильная (alloc) защитная группа иногда используется для защиты аминогруппы (или группы карбоновой кислоты или спирта), когда ортогональное снятие защиты схема обязательна. Его также иногда используют при образовании циклического пептида на смоле, когда пептид связан со смолой функциональной группой боковой цепи. Группу Alloc можно удалить с помощью тетракис (трифенилфосфин) палладий (0).[26]

Для специальных применений, например, синтетических ступеней с участием белковые микрочипы используются защитные группы, иногда называемые «литографическими», которые поддаются фотохимия на определенной длине волны света, и поэтому они могут быть удалены во время литографический виды операций.[нужна цитата ]

Региоселективное образование дисульфидной связи

Образование множества нативных дисульфидов остается сложной задачей для синтеза нативных пептидов твердофазными методами. Комбинация случайных цепей обычно приводит к нескольким продуктам с неродными дисульфидными связями.[27] Постадийное образование дисульфидных связей обычно является предпочтительным методом и осуществляется с тиолозащитными группами.[28] Различные защитные группы тиола обеспечивают множественные измерения ортогональной защиты. Эти ортогонально защищенные цистеины включаются во время твердофазного синтеза пептида. Последовательное удаление этих групп для обеспечения селективной экспозиции свободных тиоловых групп приводит к образованию дисульфидов ступенчатым образом. Необходимо учитывать порядок удаления групп, чтобы одновременно удалялась только одна группа.

Тиолзащитные группы, используемые в синтезе пептидов, требующие более позднего формирования региоселективной дисульфидной связи, должны обладать множеством характеристик.[нужна цитата ][требуется проверка ] Во-первых, они должны быть обратимыми при условиях, которые не влияют на незащищенные боковые цепи. Во-вторых, защитная группа должна выдерживать условия твердофазного синтеза. В-третьих, удаление тиоловой защитной группы должно быть таким, чтобы оно оставило нетронутыми другие тиол-защитные группы, если желательна ортогональная защита. То есть удаление PG A не должно влиять на PG B. Некоторые из обычно используемых тиоловых защитных групп включают ацетамидометил (Acm), трет-бутил (But), 3-нитро-2-пиридинсульфенил (NPYS), 2- пиридин-сульфенил (Pyr) и тритил (Trt) группы.[нужна цитата ] Важно отметить, что группа NPYS может заменить Acm PG с образованием активированного тиола.[29]

Используя этот метод, Кисо и его коллеги сообщили о первом полном синтезе инсулина в 1993 году.[30] В этой работе A-цепь инсулина была приготовлена ​​со следующими защитными группами на месте ее цистеинов: CysA6 (But), CysA7 (Acm) и CysA11 (But), оставляя CysA20 незащищенным.[30]

Синтез пептидов с помощью микроволн

Смотрите также: микроволновая химия

Синтез пептидов с помощью микроволн использовали для завершения длинных пептидных последовательностей с высокой степенью выхода и низкой степенью рацемизации.[31][32]

Синтез длинных пептидов

Поэтапное удлинение, при котором аминокислоты последовательно соединяются шаг за шагом, идеально подходит для небольших пептидов, содержащих от 2 до 100 аминокислотных остатков. Другой метод - конденсация фрагментов, в котором связаны пептидные фрагменты. Хотя первые могут удлинить пептидную цепь без рацемизация, выход падает, если только он используется для создания длинных или высокополярных пептидов. Конденсация фрагментов лучше, чем ступенчатое удлинение для синтеза сложных длинных пептидов, но ее использование должно быть ограничено для защиты от рацемизации. Конденсация фрагментов также нежелательна, поскольку связанный фрагмент должен быть в большом избытке, что может быть ограничением в зависимости от длины фрагмента.[нужна цитата ]

Новая разработка для получения более длинных пептидных цепей - это химическая перевязка: незащищенные пептидные цепи хемоселективно реагируют в водном растворе. Первый кинетически контролируемый продукт перестраивается с образованием амидной связи. Самая распространенная форма нативная химическая перевязка использует тиоэфир пептида, который реагирует с концевым остатком цистеина.[нужна цитата ]

Другие методы, применимые для ковалентного связывания полипептидов в водном растворе, включают использование расщепления интеины,[33] спонтанное образование изопептидной связи[34] и сортировка перевязка.[35]

Чтобы оптимизировать синтез длинных пептиды, метод был разработан в Медиконова долина для преобразования пептидные последовательности.[нужна цитата ] Простая предварительная последовательность (например, Лизин (Lysn); Глютаминовая кислота (Глун); (LysGlu) n), который включен в C-конец пептида, чтобы вызвать альфа-спираль -подобная структура. Это потенциально может увеличить биологический период полураспада, улучшают стабильность пептидов и ингибируют ферментативную деградацию без изменения фармакологическая активность или профиль действия.[36][37]

Циклические пептиды

О циклизации смол

Пептиды могут быть циклизованный на прочной опоре. Можно использовать различные реагенты циклизации, такие как HBTU / HOBt / DIEA, PyBop / DIEA, PyClock / DIEA.[нужна цитата ] Пептиды «голова к хвосту» могут быть изготовлены на твердой подложке. Снятие защиты с C-конца в некоторой подходящей точке делает возможным циклизацию на смоле за счет образования амидной связи с N-концом со снятой защитой. После того, как циклизация произошла, пептид отщепляется от смолы ацидолизом и очищается.[нужна цитата ]

Стратегия твердофазного синтеза циклических пептидов не ограничивается присоединением через боковые цепи Asp, Glu или Lys. Цистеин имеет очень реактивную сульфгидрильную группу в боковой цепи. Дисульфидный мостик образуется, когда атом серы одного цистеина образует единую ковалентную связь с другим атомом серы второго цистеина в другой части белка. Эти мостики помогают стабилизировать белки, особенно секретируемые клетками. Некоторые исследователи используют модифицированные цистеины, используя S-ацетомидометил (Acm), чтобы блокировать образование дисульфидной связи, но сохраняют цистеин и исходную первичную структуру белка.[нужна цитата ]

Циклизация вне смолы

Циклизация вне смолы - это твердофазный синтез ключевых промежуточных соединений с последующей ключевой циклизацией в фазе раствора, окончательное снятие защиты с любых замаскированных боковых цепей также осуществляется в фазе раствора. Это имеет недостатки, заключающиеся в том, что эффективность твердофазного синтеза теряется на стадиях растворной фазы, что требуется очистка от побочных продуктов, реагентов и непревращенных материалов и что нежелательные олигомеры может быть сформирован, если макроцикл формирование задействовано.[38]

Использование пентафторфениловых эфиров (FDPP,[39] PFPOH[40]) и BOP-Cl[41] полезны для циклизации пептидов.

Смотрите также

использованная литература

  1. ^ а б c d Исидро-Льобет А., Альварес М., Альберисио Ф. (июнь 2009 г.). «Аминокислотные защитные группы» (PDF). Химические обзоры. 109 (6): 2455–504. Дои:10.1021 / cr800323s. HDL:2445/69570. PMID  19364121.
  2. ^ а б c d е ж г час Чан WC, Белый PD (2000). Твердофазный синтез пептидов Fmoc: практический подход. Оксфорд, Великобритания: ОУП. ISBN  978-0-19-963724-9.
  3. ^ Джарадат, Дасан М. М. (28 ноября 2017 г.). «Тринадцать десятилетий пептидного синтеза: ключевые разработки в твердофазном синтезе пептидов и образовании амидных связей, используемых при лигировании пептидов». Аминокислоты. 50 (1): 39–68. Дои:10.1007 / s00726-017-2516-0. ISSN  0939-4451. PMID  29185032. S2CID  3680612.
  4. ^ Меррифилд РБ (1963). «Твердофазный синтез пептидов. I. Синтез тетрапептида». Варенье. Chem. Soc. 85 (14): 2149–2154. Дои:10.1021 / ja00897a025.
  5. ^ Митчелл AR (2008). «Брюс Меррифилд и твердофазный пептидный синтез: историческая оценка». Биополимеры. 90 (3): 175–84. Дои:10.1002 / bip.20925. PMID  18213693. S2CID  30382016.
  6. ^ Mant CT, Chen Y, Yan Z, Popa TV, Kovacs JM, Mills JB, Tripet BP, Hodges RS (2007). Характеристика пептидов и протоколы применения. Humana Press. С. 3–55. Дои:10.1007/978-1-59745-430-8_1. ISBN  978-1-59745-430-8. ЧВК  7119934. PMID  18604941.
  7. ^ Лундеманн-Хомбургер, Оливье (май 2013 г.). «Идеальное пептидное растение» (PDF). Журнал Specialty Chemicals: 30–33.
  8. ^ Tickler AK, Clippingdale AB, Wade JD (2004). «Амилоид-бета как« сложная последовательность »в твердофазном пептидном синтезе». Protein Pept. Латыш. 11 (4): 377–84. Дои:10.2174/0929866043406986. PMID  15327371.
  9. ^ Чтобы проиллюстрировать влияние субоптимальных выходов связывания для данного синтеза, рассмотрим случай, когда каждая стадия связывания должна была иметь выход не менее 99%: это привело бы к общему выходу сырца 77% для пептида из 26 аминокислот (при условии 100% выход при каждом снятии защиты); если бы каждое соединение было 95% эффективным, общий выход составил бы 25%.
  10. ^ а б Эль-Фахам А, Альберисио Ф (ноябрь 2011 г.). «Пептидные связующие реагенты - больше, чем просто суп». Химические обзоры. 111 (11): 6557–602. Дои:10.1021 / cr100048w. PMID  21866984.
  11. ^ а б c d е Монтальбетти CA, Falque V (2005). «Образование амидной связи и пептидное связывание». Тетраэдр. 61 (46): 10827–10852. Дои:10.1016 / j.tet.2005.08.031.
  12. ^ Валер, Эрик; Брэдли, Марк (2009). «Образование амидной связи: за пределами мифа о связывающих реагентах». Chem. Soc. Rev. 38 (2): 606–631. Дои:10.1039 / B701677H. PMID  19169468.
  13. ^ Эль-Фахам, Айман; Альберисио, Фернандо (9 ноября 2011 г.). «Реагенты связывания пептидов, больше, чем суп из букв». Химические обзоры. 111 (11): 6557–6602. Дои:10.1021 / cr100048w. PMID  21866984.
  14. ^ Сингх, Сандип (январь 2018 г.). «CarboMAX - улучшенное связывание пептидов при повышенных температурах» (PDF). Примечание AP. 0124: 1–5.
  15. ^ Мадлен М. Джулли, Кеннет М. Лассен (2010). «Эволюция образования амидной связи». Аркивок. viii: 189–250.CS1 maint: использует параметр авторов (ссылка на сайт)
  16. ^ Субирос-Фуносас Р., Проэнс Р., Барбас Р., Эль-Фахам А., Альберисио Ф. (сентябрь 2009 г.). «Oxyma: эффективная добавка для синтеза пептидов, заменяющая HOBt и HOAt на основе бензотриазола с меньшим риском взрыва». Химия. 15 (37): 9394–403. Дои:10.1002 / chem.200900614. PMID  19575348.
  17. ^ Альберисио Ф., Бофилл Дж. М., Эль-Фахам А., А. Кейтс С. (1998). «Использование связывающих реагентов на основе ониевой соли в синтезе пептидов». J. Org. Chem. 63 (26): 9678–9683. Дои:10.1021 / jo980807y.
  18. ^ J. Hiebl и др., J. Pept. Res. (1999), 54, 54
  19. ^ а б c Альберисио Ф (2000). Твердофазный синтез: практическое руководство. (1-е изд.). Бока-Ратон: CRC Press. п. 848. ISBN  978-0-8247-0359-2.
  20. ^ Файнберг RS, Меррифилд РБ (1974). «Хлорметилирование смол для твердофазного пептидного синтеза, катализируемое хлоридом цинка». Тетраэдр. 30 (17): 3209–3212. Дои:10.1016 / S0040-4020 (01) 97575-1.
  21. ^ Hermkens PH, Ottenheijm HC, Rees DC (1997). «Твердофазные органические реакции II: обзор литературы, ноябрь 95 - ноябрь 96». Тетраэдр. 53 (16): 5643–5678. Дои:10.1016 / S0040-4020 (97) 00279-2.
  22. ^ Шнольцер М.А., Джонс А., Алевуд Д., Кент С.Б. (2007). "Нейтрализация in situ в синтезе твердофазных пептидов Boc-химии". Int. J. Peptide Res. Терапия. 13 (1–2): 31–44. Дои:10.1007 / s10989-006-9059-7. S2CID  28922643.
  23. ^ Бейерманн М, Бинерт М (1992). «Синтез сложных пептидных последовательностей: сравнение Fmoc- и BOC-методик». Буквы Тетраэдра. 33 (26): 3745–3748. Дои:10.1016 / 0040-4039 (92) 80014-Б.
  24. ^ Джонс Дж (1992). Синтез аминокислот и пептидов. Оксфорд, Великобритания: Издательство Оксфордского университета.
  25. ^ Бергманн М, Зервас Л. (1932). "Über ein allgemeines Verfahren der Peptid-Synthese". Berichte der deutschen chemischen Gesellschaft. 65 (7): 1192–1201. Дои:10.1002 / cber.19320650722.
  26. ^ Thieriet N, Alsina J, Giralt E, Guibé F, Albericio F (1997). «Использование Alloc-аминокислот в твердофазном синтезе пептидов. Тандемные реакции снятия защиты-сочетания с использованием нейтральных условий». Буквы Тетраэдра. 38 (41): 7275. Дои:10.1016 / S0040-4039 (97) 01690-0.
  27. ^ Чжан, Дж.-В., Ву Ч.Р., Лю В., Чжан Дж.В. (1991). «Образование дисульфидной связи в пептидах диметилсульфоксидом. Область применения и применение». Варенье. Chem. Soc. 113 (17): 6657–6662. Дои:10.1021 / ja00017a044.
  28. ^ Зибер П., Камбер Б., Хартманн А., Йель А., Риникер Б., Риттель В. (январь 1977 г.). «[Полный синтез человеческого инсулина. IV. Описание завершающих этапов (авторский перевод)]». Helvetica Chimica Acta. 60 (1): 27–37. Дои:10.1002 / hlca.19770600105. PMID  838597.
  29. ^ Оттл Дж., Баттистута Р., Пипер М., Чше Х., Боде В., Кюн К., Мородер Л. (ноябрь 1996 г.). «Дизайн и синтез гетеротримерных пептидов коллагена со встроенным цистиновым узлом. Модели катаболизма коллагена матриксными металлопротеазами». Письма FEBS. 398 (1): 31–6. Дои:10.1016 / S0014-5793 (96) 01212-4. PMID  8946948. S2CID  24688988.
  30. ^ а б Акаджи К., Фуджино К., Тацуми Т., Кисо Ю. (1993). «Полный синтез человеческого инсулина региоселективным образованием дисульфида с использованием силилхлорид-сульфоксидного метода». Журнал Американского химического общества. 115 (24): 11384–11392. Дои:10.1021 / ja00077a043.
  31. ^ Pedersen, Søren L .; Тофтенг, А. Пернилль; Малик, Лейла; Дженсен, Кнуд Дж. (2012). «Микроволновое нагревание в твердофазном синтезе пептидов». Chem. Soc. Rev. 41 (5): 1826–1844. Дои:10.1039 / C1CS15214A. PMID  22012213.
  32. ^ Каппе, К. Оливер; Стадлер, Александр; Даллингер, Дорис (2012). Микроволны в органической и медицинской химии. Методы и принципы медицинской химии. 52 (Второе изд.). Вайли. ISBN  9783527331857.
  33. ^ Аранко А.С., Влодавер А., Иваи Х. (август 2014 г.). «Природный рецепт расщепления интеинов». Белковая инженерия, дизайн и выбор. 27 (8): 263–71. Дои:10.1093 / белок / gzu028. ЧВК  4133565. PMID  25096198.
  34. ^ Реддингтон СК, Ховарт М. (декабрь 2015 г.). «Секреты ковалентного взаимодействия для биоматериалов и биотехнологий: SpyTag и SpyCatcher». Современное мнение в области химической биологии. 29: 94–9. Дои:10.1016 / j.cbpa.2015.10.002. PMID  26517567.
  35. ^ Харидас В., Саданандан С., Дхепти Н.Ю. (сентябрь 2014 г.). «Биоорганические стратегии на основе сортировки для синтеза макромолекул». ChemBioChem. 15 (13): 1857–67. Дои:10.1002 / cbic.201402013. PMID  25111709. S2CID  28999405.
  36. ^ Капуста Д.Р., Торкилдсен С., Кенигс В.А., Мейер Э., Виндж М.М., Квист С., Петерсен Дж.С. (август 2005 г.). «Фармакодинамическая характеристика ZP120 (Ac-RYYRWKKKKKKK-NH2), нового, функционально селективного частичного агониста рецептора пептида FQ ноцицептина / орфанина с аквадатической активностью, сберегающей натрий-калий». Журнал фармакологии и экспериментальной терапии. 314 (2): 652–60. Дои:10.1124 / jpet.105.083436. PMID  15855355. S2CID  27318583.
  37. ^ Рицци А., Рицци Д., Марзола Дж., Реголи Д., Ларсен Б. Д., Петерсен Дж. С., Кало Г. (октябрь 2002 г.). «Фармакологическая характеристика нового лиганда рецептора ноцицептина / орфанина FQ, ZP120: исследования in vitro и in vivo на мышах». Британский журнал фармакологии. 137 (3): 369–74. Дои:10.1038 / sj.bjp.0704894. ЧВК  1573505. PMID  12237257.
  38. ^ Скотт П. (13 октября 2009 г.). Линкерные стратегии в твердофазном органическом синтезе. Джон Вили и сыновья. С. 135–137. ISBN  978-0-470-74905-0.
  39. ^ Николау К.С., Натараджан С., Ли Х., Джайн Н.Ф., Хьюз Р., Соломон М.Э., Раманджулу Дж. М., Бодди С. Н., Такаянаги М. (1998). «Полный синтез ванкомицина агликона - Часть 1: Синтез аминокислот 4–7 и построение скелета кольца AB-COD». Энгью. Chem. Int. Эд. 37 (19): 2708–2714. Дои:10.1002 / (SICI) 1521-3773 (19981016) 37:19 <2708 :: AID-ANIE2708> 3.0.CO; 2-E. PMID  29711605.
  40. ^ Восток СП, Джулли М.М. (1998). «Синтетические исследования 14-членных циклопептидных алкалоидов». Tetrahedron Lett. 39 (40): 7211–7214. Дои:10.1016 / S0040-4039 (98) 01589-5.
  41. ^ Бейкер Р., Кастро Дж. Л. (1989). «Общий синтез (+) - макбецина I». Chem. Commun. (6): 378–381. Дои:10.1039 / C39890000378.

дальнейшее чтение

внешние ссылки