Извлечение ДНК - DNA extraction

О различных методах см. Методы нуклеиновой кислоты.

Первое выделение ДНК было сделано в 1869 г. Фридрих Мишер.[1] В настоящее время это обычная процедура в молекулярная биология или судебно-медицинский анализы. Для химического метода существует множество различных наборов, используемых для экстракции, и выбор правильного поможет сэкономить время на оптимизации набора и процедурах экстракции. ПЦР Считается, что обнаружение чувствительности показывает различия между коммерческими наборами.[2]

История

Основная процедура

Сотовая связь и гистон белки, связанные с ДНК, могут быть удалены либо путем добавления протеаза или путем осаждения белков с помощью натрий или ацетат аммония, или же экстрагировали их фенол-хлороформом смесь перед ДНК-преципитацией.

После выделения ДНК растворяют в слабощелочном буфере, обычно в TE буфер, или в сверхчистая вода.

Выбор метода

Некоторые из наиболее распространенных методов выделения ДНК включают: органическая экстракция, Извлечение Chelex, и твердофазная экстракция.[3] Эти методы неизменно дают изолированную ДНК, но они различаются как по качеству, так и по количеству полученной ДНК. При выборе метода выделения ДНК следует учитывать множество факторов, включая стоимость, время, безопасность и риск заражения.

Органическое извлечение включает добавление и инкубацию в нескольких различных химических растворах;[3] включая лизис стадия, экстракция фенолом хлороформом, осаждение этанолом, и шаги стирки. Органическая экстракция часто используется в лабораториях, потому что она дешевая и дает большие количества чистой ДНК. Хотя это несложно, здесь много шагов, и это занимает больше времени, чем другие методы. Это также связано с неблагоприятным использованием токсичных химикатов. фенол и хлороформ, и существует повышенный риск заражения из-за переноса ДНК между несколькими пробирками.[4] Несколько протоколов, основанных на органической экстракции ДНК, были эффективно разработаны десятилетия назад.[5] хотя улучшенные и более практичные версии этих протоколов также были разработаны и опубликованы в последние годы.[6]

Извлечение Chelex Метод включает добавление смолы Chelex к образцу, кипячение раствора, затем встряхивание и центрифугирование. Клеточные материалы связываются с гранулами Chelex, в то время как ДНК доступна в супернатант.[4] Метод Chelex намного быстрее и проще, чем органическая экстракция, и для него требуется только одна пробирка, что снижает риск загрязнения ДНК. К сожалению, экстракция Chelex не дает такого большого количества, и полученная ДНК является одноцепочечной, что означает, что ее можно использовать только для ПЦР -основанные анализы, а не для RFLP.[4]

Твердофазная экстракция например, использование экстракция на спин-колонке метод использует тот факт, что ДНК связывается с кремнезем. Образец, содержащий ДНК, добавляют в колонку, содержащую силикагель или гранулы диоксида кремния и хаотропный соли. Хаотропные соли нарушают водородную связь между цепями и способствуют связыванию ДНК с диоксидом кремния, заставляя нуклеиновые кислоты становиться гидрофобными. Таким образом, остатки фосфата становятся доступными для адсорбции.[7] ДНК связывается с диоксидом кремния, а остальная часть раствора вымывается этанолом для удаления хаотропных солей и других ненужных компонентов.[3] Затем ДНК можно регидратировать водными растворами с низким содержанием соли, что позволяет элюирование ДНК из бусинок.

Этот метод дает высококачественную, в основном, двухцепочечную ДНК, которую можно использовать как для ПЦР и RFLP анализ. Эта процедура может быть автоматизирована[4] и имеет высокую пропускную способность, хотя и ниже, чем у фенол-хлороформный метод. Это одноэтапный метод, т.е. вся процедура выполняется в одной тубе. Это снижает риск заражения, что делает его очень полезным для судебно-медицинской экспертизы ДНК. Коммерческие наборы для множественной твердофазной экстракции производятся и продаются различными компаниями; Единственная проблема в том, что они дороже, чем органическая экстракция или экстракция Chelex.

Особые типы

Для выделения ДНК из некоторых образцов необходимо выбрать конкретные методы. Типичные образцы со сложным выделением ДНК:

  • археологические образцы, содержащие частично деградированную ДНК, см. древняя ДНК [8]
  • образцы, содержащие ингибиторы последующих процедур анализа, в первую очередь ингибиторы ПЦР, такие как гуминовая кислота из почвы, индиго и другие красители для ткани или гемоглобин в крови
  • образцы микроорганизмов с толстой клеточной стенкой, например дрожжи
  • образцы, содержащие смешанную ДНК из нескольких источников

Внехромосомную ДНК, как правило, легко выделить, особенно плазмиды могут быть легко выделены лизисом клеток с последующим осаждением белков, которые улавливают хромосомную ДНК в нерастворимой фракции, а после центрифугирования плазмидную ДНК можно очистить от растворимой фракции.

Экстракция ДНК Хирта - это изоляция всего внехромосомная ДНК в клетке млекопитающего. Процесс экстракции Hirt избавляется от высокой молекулярной массы. ядерная ДНК, оставляя только низкомолекулярный митохондриальная ДНК и любые вирусные эписомы присутствует в камере.

Обнаружение ДНК

Основная статья: Количественное определение нуклеиновых кислот

А индикатор дифениламина (DPA) подтвердит наличие ДНК. Эта процедура включает химический гидролиз ДНК: при нагревании (например, ≥95 ° C) в кислоте реакция требует дезоксирибоза сахар и поэтому специфичен для ДНК. В этих условиях 2-дезоксирибоза превращается в w-гидроксилевулиниловый альдегид, который реагирует с соединением, дифениламином, с образованием соединения синего цвета. Концентрацию ДНК можно определить, измерив интенсивность поглощения раствора при длине волны 600 нм с спектрофотометр и по сравнению с стандартная кривая известных концентраций ДНК.

Измерение интенсивности поглощения раствора ДНК на длинах волн 260 нм и 280 нм используется как мера чистоты ДНК. ДНК поглощает УФ свет на 260 и 280 нм, а ароматические белки поглощают УФ-свет на 280 нм; чистый образец ДНК имеет соотношение 1,8 при 260/280 и относительно свободен от белкового загрязнения. Препарат ДНК, загрязненный белком, будет иметь соотношение 260/280 ниже 1,8.

ДНК можно определить количественно, разрезав ДНК с помощью рестрикционный фермент, запустив его на агарозе гель, окрашивание бромид этидия (EtBr) или другое окрашивание и сравнение интенсивности ДНК с маркером ДНК известной концентрации.

С использованием Саузерн-блот метод, эта количественно определенная ДНК может быть выделена и исследована далее с использованием ПЦР и RFLP анализ. Эти процедуры позволяют дифференцировать повторяющиеся последовательности в геноме. Именно эти техники судебно-медицинский ученые используют для сравнения, идентификации и анализа.

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ Dahm R (январь 2008 г.). «Открытие ДНК: Фридрих Мишер и первые годы исследований нуклеиновых кислот». Генетика человека. 122 (6): 565–81. Дои:10.1007 / s00439-007-0433-0. PMID  17901982.
  2. ^ Йошикава Х., Догруман-Аль Ф., Догруман-Ай Ф., Тюрк С., Кустимур С., Балабан Н., Султан Н. (октябрь 2011 г.). «Оценка наборов для выделения ДНК для молекулярной диагностики подтипов человека Blastocystis из образцов кала». Паразитологические исследования. 109 (4): 1045–50. Дои:10.1007 / s00436-011-2342-3. PMID  21499752.
  3. ^ а б c Элкинс К.М. (2013). «Извлечение ДНК». Судебная ДНК-биология. С. 39–52. Дои:10.1016 / B978-0-12-394585-3.00004-3. ISBN  9780123945853.
  4. ^ а б c d Батлер Дж. М. (2005). Криминалистическое типирование ДНК: биология, технология и генетика STR-маркеров (2-е изд.). Амстердам: Elsevier Academic Press. ISBN  9780080470610. OCLC  123448124.
  5. ^ Мармур, Дж. (1961). «Методика выделения дезоксирибонуклеиновой кислоты из микроорганизмов». Журнал молекулярной биологии. 3 (2): 208 – IN1. Дои:10.1016 / S0022-2836 (61) 80047-8.
  6. ^ Сальва-Серра Ф, Свенссон-Стадлер Л., Бускетс А., Хаэн-Лучоро Д., Карлссон Р., Мур Э. Р., Гомила М. (2018). «Протокол экстракции и очистки высококачественной и количественной бактериальной ДНК, применимый для секвенирования генома: модифицированная версия процедуры Мармура». Обмен протоколами. Дои:10.1038 / protex.2018.084.
  7. ^ Ли, Ричард (11 марта 2015 г.). Судебная биология (2-е изд.). Бока-Ратон. ISBN  978-1439889725. OCLC  907517669.
  8. ^ Pääbo S (март 1989 г.). «Древняя ДНК: выделение, характеристика, молекулярное клонирование и ферментативная амплификация». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 86 (6): 1939–43. Bibcode:1989ПНАС ... 86.1939П. Дои:10.1073 / пнас.86.6.1939. ЧВК  286820. PMID  2928314.

дальнейшее чтение

  • Сэмбрук, Майкл Р. Грин, Джозеф. Молекулярное клонирование. (4-е изд. Изд.). Колд-Спринг-Харбор, Нью-Йорк: Лаборатория Колд-Спринг-Харбор, пр. ISBN  1936113422.
  • Судебная биология, Ричард Ли, (2015) Бока-Ратон: CRC Press, Taylor & Francis Group. ISBN  9781439889701

внешняя ссылка