GroEL - GroEL

HSPD1
Белок CD44 PDB 1poz.png
Доступные конструкции
PDBПоиск ортолога: PDBe RCSB
Идентификаторы
ПсевдонимыHSPD1, CPN60, GROEL, HLD4, HSP-60, HSP60, HSP65, HuCHA60, SPG13, белок теплового шока D (Hsp60) член 1
Внешние идентификаторыOMIM: 118190 MGI: 96242 ГомолоГен: 1626 Генные карты: HSPD1
Расположение гена (человек)
Хромосома 2 (человек)
Chr.Хромосома 2 (человек)[1]
Хромосома 2 (человек)
Геномное расположение HSPD1
Геномное расположение HSPD1
Группа2q33.1Начните197,486,584 бп[1]
Конец197,516,737 бп[1]
Экспрессия РНК шаблон
PBB GE CD44 204489 s при tn.png

PBB GE CD44 204490 s при tn.png

PBB GE CD44 212063 at tn.png
Дополнительные данные эталонного выражения
Ортологи
РазновидностьЧеловекМышь
Entrez
Ансамбль
UniProt
RefSeq (мРНК)

NM_002156
NM_199440

NM_010477
NM_001356512

RefSeq (белок)

NP_002147
NP_955472

NP_034607
NP_001343441

Расположение (UCSC)Chr 2: 197.49 - 197.52 МбChr 1: 55.08 - 55.09 Мб
PubMed поиск[3][4]
Викиданные
Просмотр / редактирование человекаПросмотр / редактирование мыши

GroEL белок, который принадлежит к шаперонин семья молекулярные шапероны, и содержится во многих бактериях.[5] Это необходимо для правильного складывание многих белков. Для правильного функционирования GroEL требуется комплекс белка кохаперонина, напоминающий крышку. GroES. В эукариоты белки Hsp60 и Hsp10 структурно и функционально практически идентичны GroEL и GroES соответственно.

Механизм

Внутри клетки процесс GroEL / ES-опосредованного сворачивания белка включает несколько раундов связывания, инкапсуляции и высвобождения субстратного белка. Развернутые белки-субстраты связываются с гидрофобным связывающим участком на внутреннем крае открытой полости GroEL, образуя бинарный комплекс с шаперонином. Связывание субстратного белка таким образом, помимо связывания АТФ, индуцирует конформационное изменение что позволяет объединить бинарный комплекс с отдельной крышкой, GroES. Привязка GroES к открытой полости шаперонин побуждает отдельные субъединицы шаперонина вращаться таким образом, что сайт связывания гидрофобного субстрата удаляется изнутри полости, вызывая выброс субстратного белка с обода в теперь в значительной степени гидрофильную камеру. Гидрофильная среда камеры способствует захоронению гидрофобных остатков субстрата, вызывая складывание субстрата. Гидролиз АТФ и связывание нового белка-субстрата с противоположной полостью посылает аллостерический сигнал, вызывающий высвобождение GroES и инкапсулированного белка в цитозоль. Данный белок претерпевает несколько раундов сворачивания, каждый раз возвращаясь в исходное развернутое состояние, пока родное телосложение или достигается промежуточная структура, нацеленная на достижение исходного состояния. Альтернативно, субстрат может поддаться конкурирующей реакции, такой как неправильная укладка и агрегация с другими неправильно свернутыми белками.[6]

Термодинамика

Суженный характер внутренней части молекулярного комплекса сильно способствует компактным молекулярным конформациям белка-субстрата. Свободный в растворе, дальний, неполярный взаимодействие может происходить с высокой стоимостью только в энтропия. В непосредственной близости от комплекса GroEL относительная потеря энтропии намного меньше. Метод захвата также имеет тенденцию концентрировать неполярные сайты связывания отдельно от полярных сайтов. Когда неполярные поверхности GroEL удаляются, вероятность того, что любая данная неполярная группа встретит неполярный внутримолекулярный сайт, намного выше, чем в объемном растворе. Гидрофобные участки, которые были снаружи, собраны вместе в верхней части СНГ домена и связывают друг друга. Геометрия GroEL требует, чтобы полярные структуры вели, и они охватывали неполярную сердцевину, когда она выходит из транс сторона.

Структура

Конструктивно GroEL представляет собой тетрадекамер с двойным кольцом, причем как СНГ и транс кольца, состоящие из семи субъединиц каждое. Конформационные изменения, которые происходят в центральной полости GroEL, приводят к тому, что внутренняя часть GroEL становится гидрофильной, а не гидрофобной, и, вероятно, это то, что способствует сворачиванию белка.

Ключ к активности GroEL находится в структуре мономера. Мономер Hsp60 имеет три отдельных участка, разделенных двумя шарнирными областями. В апикальный раздел содержит много гидрофобных участок связывания для развернутого белка субстраты. Многие глобулярные белки не связываются с апикальным доменом, потому что их гидрофобные части сгруппированы внутри, вдали от водной среды, поскольку это термодинамически оптимальное телосложение. Таким образом, эти «сайты субстрата» будут связываться только с белками, которые не свернуты оптимально. Апикальный домен также имеет сайты связывания мономеров Hsp10 GroES.

Экваториальная область имеет прорезь около точки шарнира для привязки АТФ, а также две точки прикрепления для другой половины молекулы GroEL. Остальная часть экваториального разреза умеренно гидрофильна.

Добавление АТФ и GroES резко влияет на конформацию СНГ домен. Этот эффект вызван сгибание и вращение в двух шарнирных точках мономеров Hsp60. Промежуточный домен складывается вниз и внутрь примерно на 25 ° на нижнем шарнире. Этот эффект, умноженный на совместное изгибание всех мономеров, увеличивает экваториальный диаметр клетки GroEL. Но апикальный домен поворачивается на полные 60 ° вверх и наружу на верхнем шарнире, а также поворачивается на 90 ° вокруг оси шарнира. Это движение очень широко открывает клетку в верхней части СНГ домен, но полностью удаляет сайты связывания субстрата изнутри клетки.

Взаимодействия

GroEL был показан взаимодействовать с GroES,[7][8] ALDH2,[8] Каспаза 3[7][9] и Дигидрофолатредуктаза.[10]

Морфогенез фага Т4

В гены из бактериофаг (фаг) Т4 что кодирует белки с ролью в определении структуры фага Т4 были идентифицированы с использованием условно-летальных мутанты.[11] Большинство этих белков оказались либо основными, либо второстепенными структурными компонентами завершенной фаговой частицы. Однако среди продуктов генов (gps), необходимых для сборки фага, Snustad[12] определили группу GPS, которые действуют каталитически вместо того, чтобы встраиваться в структуру фага. Эти каталитические gps включали gp31. Бактерия Кишечная палочка является хозяином для фага Т4, и кодируемый фагом белок gp31, по-видимому, функционально гомологичен Кишечная палочка Чапароновый белок GroES и способен замещать его при сборке вирионов фага Т4 во время инфекции.[5] Роль белка gp31, кодируемого фагом, по-видимому, заключается во взаимодействии с Кишечная палочка кодируемый хозяином белок GroEL, способствующий правильной укладке и сборке главного капсидного белка фаговой головки, gp23.[5]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ а б c ГРЧ38: Ансамбль выпуск 89: ENSG00000144381 - Ансамбль, Май 2017
  2. ^ а б c GRCm38: выпуск ансамбля 89: ENSMUSG00000025980 - Ансамбль, Май 2017
  3. ^ "Справочник человека по PubMed:". Национальный центр биотехнологической информации, Национальная медицинская библиотека США.
  4. ^ «Ссылка на Mouse PubMed:». Национальный центр биотехнологической информации, Национальная медицинская библиотека США.
  5. ^ а б c Зейлстра-Ряллс Дж., Файет О, Георгопулос С. (1991). «Универсально консервативные шаперонины GroE (Hsp60)». Анну. Rev. Microbiol. 45: 301–25. Дои:10.1146 / annurev.mi.45.100191.001505. PMID  1683763.
  6. ^ Хорвич А.Л., Фентон В.А., Чепмен Э., Фарр Г.В. (2007). «Два семейства шаперонинов: физиология и механизм». Анну. Rev. Cell Dev. Биол. 23: 115–45. Дои:10.1146 / annurev.cellbio.23.090506.123555. PMID  17489689.
  7. ^ а б Самали А., Цай Дж., Животовский Б., Джонс Д.П., Оррениус С. (апрель 1999 г.). «Присутствие преапоптотического комплекса прокаспазы-3, Hsp60 и Hsp10 в митохондриальной фракции клеток jurkat». EMBO J. 18 (8): 2040–8. Дои:10.1093 / emboj / 18.8.2040. ЧВК  1171288. PMID  10205158.
  8. ^ а б Ли К. Х., Ким Х. С., Чжон Х. С., Ли Ю. С. (октябрь 2002 г.). «Шаперонин GroESL опосредует сворачивание белка митохондриальной альдегиддегидрогеназы печени человека в Escherichia coli». Biochem. Биофиз. Res. Сообщество. 298 (2): 216–24. Дои:10.1016 / S0006-291X (02) 02423-3. PMID  12387818.
  9. ^ Xanthoudakis S, Roy S, Rasper D, Hennessey T, Aubin Y, Cassady R, Tawa P, Ruel R, Rosen A, Nicholson DW (апрель 1999 г.). «Hsp60 ускоряет созревание прокаспазы-3 вышестоящими протеазами-активаторами во время апоптоза». EMBO J. 18 (8): 2049–56. Дои:10.1093 / emboj / 18.8.2049. ЧВК  1171289. PMID  10205159.
  10. ^ Mayhew M, da Silva AC, Martin J, Erdjument-Bromage H, Tempst P, Hartl FU (февраль 1996 г.). «Сворачивание белка в центральной полости шаперонинового комплекса GroEL-GroES». Природа. 379 (6564): 420–6. Дои:10.1038 / 379420a0. PMID  8559246. S2CID  4310511.
  11. ^ Эдгар RS, Эпштейн RH (февраль 1965 г.). «Генетика бактериального вируса». Scientific American. 212 (2): 70–8. Bibcode:1965SciAm.212b..70E. Дои:10.1038 / scientificamerican0265-70. PMID  14272117.
  12. ^ Снустад Д.П. (август 1968 г.). «Доминирующие взаимодействия в клетках Escherichia coli, смешанных с бактериофагом T4D дикого типа и мутантами янтарного типа, и их возможное влияние на тип функции гена-продукта: каталитическая или стехиометрическая». Вирусология. 35 (4): 550–63. Дои:10.1016/0042-6822(68)90285-7. PMID  4878023.

дальнейшее чтение

внешняя ссылка